氨基比林-N-脱甲基酶（AND）试剂盒说明书
分光光度法50管/24样
注意：正式测定之前选择2-3个预期差异大的样本做预测定。
测定意义：细胞色素P酶是一组在外源物质代谢中，尤其是药物和*物，具有重要作用的酶系。AND作为P酶系的重要一员，相当于CYP3A4亚型，与药物的去甲基化反应密切相关。
测定原理：
AND催化氨基比林释放甲醛，通过Nash比色法测定甲醛含量，即可计算出AND活性。
自备仪器和用品：
可见分光光度计、普通离心机，超速离心机、水浴锅、可调式移液枪、1mL玻璃比色皿、蒸馏水、无水乙醇和冰。
试剂组成和配制：
试剂一：粉剂×1瓶，4℃保存。临用前加50mL蒸馏水充分溶解。
试剂二：液体×1瓶，4℃保存。
试剂三：粉剂×1瓶（棕色瓶），4℃避光保存。临用前加入2.6mL无水乙醇，充分溶解。
试剂四：粉剂×1瓶，4℃保存。临用前加入2.6mL蒸馏水，充分溶解。
试剂五：粉剂×1瓶，室温保存。临用前加蒸馏水10mL充分溶解。
试剂六：液体×1瓶，室温保存。
试剂七：液体×1瓶，4℃保存。
标准液：液体×1瓶，-20℃保存。临用前取1.5mLEP管，加入10μl标准液，加μl蒸馏水，混匀即为0.05mmol/L标准甲醛溶液，4℃保存。
粗酶液提取：
1、除去细胞核，线粒体等大分子物质：称约0.5g组织，加入1mL试剂一，冰上充分研磨，g4℃离心30min，取上清液转入超速离心管。
2、粗制微粒体：4℃，0g，离心60min，弃上清液。
3、除血红蛋白等杂质：向步骤2的沉淀中加1mL试剂一，盖紧后充分震荡溶解，0g离心30min，弃上清液。
4、最终微粒体：向步骤3的沉淀中加试剂二0.5mL，盖紧后充分震荡溶解，即粗酶液，待测。该待测液需当天使用。
AND活性测定操作：
1.分光光度计预热30min，调节波长到nm，蒸馏水调零。
2.试剂二置于37℃水浴中预热30min。
3.对照管：取1支EP管，加入50μL粗酶液，μL试剂二，50μL试剂三，50μL蒸馏水，混匀后置于37℃水浴保温30min；立即加入μL试剂五，混匀后置于冰浴中5min；取出后加入μL试剂六，混匀后室温静置5min；室温rpm离心5min；取新的EP管，加入μL上清液，μL试剂七，混匀后60℃水浴10min，然后取出，用冷水冷却5min，于nm测定光吸收，记为A对照管。
4.测定管：取1支EP管，加入50μL粗酶液，μL试剂二，50μL试剂三，50μL试剂四，混匀后置于37℃水浴保温30min；立即加入μL试剂五，混匀后置于冰浴中5min；取出后加入μL试剂六，混匀后室温静置5min；室温rpm离心5min；取1支新EP管，加入μL上清液，μL试剂七，混匀后60℃水浴10min，然后取出，用冷水冷却5min，于nm测定光吸收，记为A测定管。
5.标准管：取1支EP管，加入μL标准品，μL试剂七，混匀后60℃水浴10min，然后取出，用冷水冷却5min，于nm测定光吸收，记为A标准管。
注意：每个样品都需要做对照管。
AND活性计算：
(1).按照蛋白浓度计算:
活性单位定义：37℃中每分钟每毫克蛋白催化产生1nmol甲醛为1个酶活单位。
AND活性(nmol/min/mgprot)=C标准品×V标准品×（A测定管－A对照管）÷A标准管×稀释倍数÷（Cpr×V样）÷T
=45×（A测定管－A空白管）÷A标准管÷Cpr
(2).按照样本质量计算:
活性单位定义：37℃中每分钟每克样品催化产生1nmol甲醛为1个酶活单位。
AND活性(nmol/min/g鲜重)=C标准品×V标准品×（A测定管－A对照管）÷A标准管×稀释倍数÷(W×V样)÷T
=45×（A测定管－A对照管）÷A标准管÷W
C标准品：0.05mmol/L=50μmol/L；V标准品：μL=0.L；稀释倍数：V反总÷V上清液=（50++50+50++）÷=2.7；Cpr：粗酶液蛋白质浓度mg/mL，需要另外测定，建议使用本公司BCA蛋白质含量测定试剂盒；V样：加入粗酶液体积，50μL=0.05mL；W：样本质量，g；T：反应时间，30min。
注意事项：
1、粗酶液需在当日完成测定，如需保存，则向粗酶液提取步骤3的沉淀中加0.5ml20%的甘油，分装后，-80℃保存；
2、试剂三和试剂四需临用前配制，如当天没有用完，4℃避光保存，可用1周；
3、粗酶液可直接用于蛋白浓度测定，建议用BCA法测蛋白含量。
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